GUS染色步骤：1.将准备好的材料浸泡在GUS染色液中，山东糖原染色试剂盒量大从优，于25-37℃保温1小时至过夜。 2.叶片等绿色材料转入70%乙醇中脱色2-3次，至阴性对照材料呈白色。 3，山东糖原染色试剂盒量大从优.肉眼或显微镜下观察，白色背景上的蓝色小点即为GUS表达位点。注：用于染色的植物材料的制备方法要因涉及的特定组织和部位的不同而异。例如，拟南芥的根、花和叶片以及幼苗的根就可以不作任何预处理而直接染色。但是像和马铃薯这些植物的茎和叶就必须在染色前切成薄片（1-3mm），山东糖原染色试剂盒量大从优。当操作大的组织和样品时，可以选用真空渗入法来帮助底物和酶渗入细胞。一般厚度不超过3mm，大小不超过5×5m㎡。山东糖原染色试剂盒量大从优

糖原染色：细胞内含1，2-乙二醇基的多糖类经过碘酸氧化后产生醛基，与特殊染液作用，使无色品红变成红色化合物，沉淀于胞质之中。红色的深浅与细胞中起反应的1，2-乙二醇基的量呈正比。用于不典型巨核细胞与李—斯细胞的鉴别，前者PAS反应为强阳性，后者为阴性或弱阳性；用于高雪细胞和尼曼一匹克细胞的鉴别，前者PAS反应为强阳性，而后者反应为阴性或弱性。正常值正常情况下，红细胞系统的原、幼红细胞和成熟红细胞；粒细胞系统的原粒细胞、原单核细胞和大多数淋巴细胞为阴性反应。自早幼粒阶段以后的粒细胞和幼单核细胞可呈弱阳性反应。山东糖原染色试剂盒量大从优较大增强了染色效果；性能稳定，特异性强；操作简捷，*需1h左右。

粘液染色法：粘液一般有以下几点特性：（1） 对盐基性染料有亲合力，因此在HE染色中、切片上的粘液呈污秽蓝色。（2） 对某种盐基性人工合成染料如硫堇或甲苯胺蓝有异染性。（3） 遇醋酸发生沉淀，胃粘蛋白则除外。（4） 溶于弱碱溶液。常用的粘液染色有以下几种：1、P．A．S染色法：操作方法同前，结果；中性粘液性物质，某些酸性粘液物质呈红色，核呈蓝色。2、AB/P.A.S染色法：该种方法的特点是能同时显示出酸性和中性粘液物质。操作方法：（1）切片常规脱蜡入水。（2）3%醋酸液洗2分钟，入1%阿利新兰醋酸液（PH2.5）10-20分钟。（3）蒸馏水洗。（4）按P.A.S染色程序。（5）苏木素淡染2-3分钟，水洗。（6）常规脱水、封片。

糖原染色生物技术优势：（1）拥有针对不同组织的特殊固定液；（2）拥有日本进口的各种染料，保证切片染色效果；（3）拥有千锤百炼的专业人才队伍，保证实验快速、有效的完成。实验样本要求：（1）植物材料在选择时须尽可能不损伤植物体或所需要的部分；（2）动物材料取用时需对动物施以麻醉，常用的麻醉剂有氯仿和，或将动物杀死后迅速取出所需要的组织；（3）取材必须新鲜，这一点对于从事细胞生物学研究尤为重要，应该尽可能割取生活着的组织块，并随即投入固定液，固定液与组织块的体积比应在10:1；（4）切取材料时刀要锐利，避免因挤压细胞使其受到损伤；（5）切取的材料应小而薄，便于固定液迅速渗入内部。一般厚度不超过3mm，大小不超过5×5m㎡。组织石蜡切片的染色检测。

糖原染色在使用过程中需要注意以下几个方面：Schiff氏染液的配制是关键，尤其是偏重亚硫酸钠的质量，打开应是粉剂，且带有硫的气味，若成团或没有气味，则不能用，配制时使用的容器、药勺、称药天平与称药纸等必须洁净、无污染。新配制好的Schiff剂为无色透明液体[1]，配好后可分成小份置于-20℃保存，用时取一份恢复到室温即可。沈洪武等通过对比染色发现，冷冻保存1年的Schiff液的染色结果与新鲜配制的染色结果一致[5]。0.5％～1％高碘酸（pH值在3.0～5.0之间），环境温度以不高于20℃为宜，室温高时氧化时间适当缩短；如果染色时环境温度较高且高碘酸作用时间长，可使某些物质成分发生非特异反应，使染色结果出现假阳性。因此，室温较高时可适当缩短反应时间。糖原的固定要及时，而且标本要新鲜。山东糖原染色试剂盒量大从优

过碘酸将血细胞内的糖原氧化，生成醛基。山东糖原染色试剂盒量大从优

糖原染色在使用过程中需要注意以下几个方面：PAS染色时需于暗处加盖反应，染色时间10～20min（染色时间长短取决于试剂的质量和环境温度，SO浓度高，染色时间适当缩短；环境温度高，染色时间也应适当缩短，反之则需适当延长反应时间）。染色过程中不能接触伊红，以免造成颜色误差[4]。作糖原染色时，较好作消化对照，即取两张连续切片，其中一张脱蜡至水后，用1％淀粉酶于37℃消化30min，水洗后与不经消化处理的切片一起置0.5％高碘酸液氧化，如经消化处理的切片染色阴性，不经消化处理的切片染色阳性，即肯定为糖原[6]。偏重亚硫酸钠（钾）溶液配置后，不能保存，因此，必须现配现用，用过一次即应废弃。各种试剂必须是化学纯或者分析纯。器皿、染色缸必须洁净而干燥。山东糖原染色试剂盒量大从优

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