**初是sanger法，后来发展了几种高通量测序方法1sanger法：双脱氧测序的原理，DNA合成时加上一个ddNTP从而终止这条链的延伸，毛细管电泳读取分析序列。一般教材讲的都是这种方法，经典，读长800bp，但是通量小成本高。2454：也称焦磷酸测序，一个run下来约400M的数据量。将emulsionPCR产物连磁珠上，放入PicoTiterPlate，测序反应是通过释放PPi经过ATP***化酶和荧光素酶作用发光D捕捉拍照，反应是连续的，所以遇到连续的碱基如polyA时，454易产生误差。3Solexa：边合成边测序，将DNA单链固定在芯片上，合成DNA簇，是一种可逆阻断的合成反应，每个循环只加上一个碱基、系统拍照一次。通过读取拍照信号分析序列，江苏本地RNA合成仪品牌企业，一个run约200个G数据量以上。目前能量比较高，不足是读长短，现在有PE150，可以测通300bp。4Soild：与454有相似之处，该方法更精细，磁珠富集，磁珠更小，密度更高。它的独特之处是连接反应测序，加入8碱基荧光单链混合物。一次测序读两个碱基，江苏本地RNA合成仪品牌企业，江苏本地RNA合成仪品牌企业，获得颜色编码组成的碱基序列，通过几轮反应**终得出序列。5Iontorrent：特点是小巧。试剂通过集成的流体通路进入芯片中，密布于芯片上的反应孔立即成为上百万个微反应体系。

    手工测序以及自动测序均属于DNA序列测定，手工测序可分为maxam-gilbert化学降解法与sanger双脱氧链终止法，事实上，目前dna序列分析的主流是自动测序。373型、377型、310型、3700和3100型等多种型号DNA测序仪均已经被美国peabi公司生产出来了，在这几款DNA测序仪中，临床检测实验室使用**多的一种型号要属310型。发展历史70年代末，化学法和双脱氧手动测序，同位素标记法分别由WalterGilbert与FrederickSanger发明出来。80年代中期，应用双脱氧终止法原理，自动测序仪出现了，同位素被荧光取代了，计算机图象识别。90年代中期，测序仪得到了重大改进，凝胶电泳由集束化的毛细管电泳取代了。2001年，人类基因组框架图被完成。注意事项1．bigdye荧光标记终止底物循环测序试剂盒为本实验使用的测序试剂盒，通常650bp左右为可测dna长度，(±)%为本仪器dna测序精确度，如果仪器所需测定的长度高于650bp，不能辨读的碱基n<2%，那么就需要设计另外的引物。能够设计反向引物对同一模板进行测序，相互印证以便确保更为准确地测序。能够人工核对n碱基，有时能够将其辨读出来，为了使测序的精确度提高，按照星号提示位置，能够对该处彩色图谱进行人工分析，进一步核对该处碱基。

    表面等离子共振技术，简称SPR，是从20世纪90年代发展起来的一种新技术，对在生物传感芯片（biosensorchip）上配位体与分析物之间的相互作用情况的检测是SPR应用原理。在各个领域得到***地应用。原料有如下几种亲和分子：1.凝集素–聚糖/糖蛋白（Lectin–Polysacharride/Glyctein）2.蛋白质–小分子tein–SmallMolecule）3.蛋白质–核酸tein–NucleicAcid）4.细胞–配体（Cell–Ligand）5.蛋白质–蛋白质（tein）6.多肽–受体（Peptide–Receptor）7.抗体–抗原（Antibody–Antigen）8.膜受体–配体（MembraneReceptor–Ligand）调和方法任何一对亲和分子，一个（分析物）在溶液中放置，另一个（靶分子）在生物传感器表面键合。如果在靶分子键合的生物传感器表面有含有分析物的溶液流经。就会生成亲和性复合物。双通道流动注射分析式微射流系统为SensiQ所配备，有85nL流动池在其内。一次性的SPR生物传感器为SensiQ所使用，能够简便地装卸。有单层的羧基化寡聚环氧乙烷（CarboxylatedOligoethyleneoxide）基质包被于生物传感器表面，能够对多种生物分子进行键合，并且对非特异性结合及变性进行有效地阻止。靶生物分子既能够在固相生物传感器表面键合，又能够在液相中存在。

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