cs液体培养基和1/2cs液体培养基在用不同ph超纯水(ph为)配制时的ph都较为稳定，在未调ph的情况下，可直接用于多种植物培养。如图8所示。(2)以克新18号马铃薯无菌苗为例，观察在未调ph和将ph调至：a、培养基制作方法：随机选取超纯水，测得其ph为，用于配制8种不同的液体培养基。第一种：1/2ms未调ph液体培养基，其为取1/2ms基本培养基置于ph为；第二种：1/2cs未调ph液体培养基，其为取1/2cs基本培养基置于ph为；第三种：ms未调ph液体培养基，其为取ms基本培养基置于ph为；第四种：cs未调ph液体培养基，其为取cs基本培养基置于ph为；第五种：1/，其为取1/2ms基本培养基置于ph为，调ph至；第六种：1/，其为取1/2cs基本培养基置于ph为，调ph至；第七种：，其为取ms基本培养基置于ph为，调ph至；第八种：，其为取cs基本培养基置于ph为，调ph至。b、培养方法：从培养实例4所述培养基获得长势**的马铃薯幼苗，在清水中缓苗2-3d后选取长势一致的马铃薯幼苗，如图9-a所示，置于上述8种不同液体培养基8d，每隔2d更新1次液体培养基；于温度22-23℃、湿度50-70％、光照强度2000-3000lux、光照和黑暗交替(光照时间14h、黑暗时间10h)条件下培养。RPMI1640培养基能够提高细胞的存活率。上海基础培养基市场报价

    在工作台上把已经冲洗干净的外植体浸入75％酒精中消毒30s，用无菌水冲洗3～4次，使用白猫漂白水和无菌水按1：4的体积比配制消毒液，将外植体放入消毒液浸泡40min。通过采用上述技术方案，这种方式对外植体消毒方法简单，能够**降低外植体的死亡率，消毒成活率较高。本发明在一较佳示例中可以进一步配置为：在s1中，外植体选择为**绣球的枝芽饱满的半木质化枝条茎尖部分。综上所述，本发明包括以下至少一种有益技术效果：本发明通过液体**培养技术，以芽为原材料，获取方便，增殖倍率高达8～10倍，生根率达到95％以上，苗木规格整齐，性状保持稳定，同时节省成本，适合工厂化大规模生产质量绣球种苗。附图说明图1是绣球的液体培养基组培快繁方法的流程示意图。具体实施方式以下结合附图对本发明作进一步详细说明。实施例：参照图1，为本发明公开的一种绣球的液体培养基组培快繁方法，具体步骤如下：(一)、试验材料：供试材料采自江苏东郁植物科技有限公司苗圃的**绣球，品种为无尽夏(endlesssummer“bloomstruck”)，外植体选用当年生枝芽饱满的半木质化枝条茎尖部分。(二)、试验方法：绣球**培养过程按以下步骤进行：初代培养、继代培养、生根培养。。重庆F12培养基答疑解惑MEM培养基适合多种类型的细胞培养实验。

    NalgenePET/PETG方形培养基瓶NalgeneSquarePET和PETG培养基瓶是当今制*，诊断和生物技术市场中理想的培养基、血清、缓冲液、试剂储存和运输容器。这些耐用、轻质且防碎的聚对苯二甲酸乙二醇酯（PET）和厚壁抗破裂乙二醇改性（PETG）瓶兼容高密度聚乙烯（HDPE）密封盖，具有三种兼容的密封盖类型；标准螺纹密封盖，防盗密封盖和带隔膜的密封盖。独特的Nalgene瓶和密封盖设计无需衬垫或垫圈即可提供可可靠的防漏性能，并提供有效的氧气和二氧化碳屏障，以维持试剂的适当pH值。这些包装瓶可以从科研扩展到生产，同时提供实验室使用的包装瓶，以及手动和自动化灌装线。Nalgene培养基瓶的设计和制造符合我们保证安全和防漏的严格要求，原始树脂具有DMF编号，且符合以下法规规范：USPClassVI,USP，和ISO10993-3。产品无细胞毒性，无热原，无致突变性，采用动物源性成分（ADCF）‡材料制成，有助于确保成分纯度。对于适用于特定Nalgene瓶的监管要求和认证，请联系Nalgene法规支持部门。化学品会影响塑料的强度、柔韧性、表面外观、颜色、尺寸或重量，因此您应仔细选择适合您特定用途的材料。通常，与PETG相比，PET树脂对稀酸、脂肪醇、脂肪烃和干盐的耐受性更强。

    从而提高菌株增殖速率，但是浓度过大会导致抑菌现象，后期菌株增殖放缓，以产酸为主，2-羟基乙胺还能够作为阳离子表面活性剂，使得细胞壁疏松，提高细胞通透性，促进谷氨酸释放到发酵液，从而提高了谷氨酸产量和糖酸转化率。三、通过上述实验确定cecl3添加量为10mg/l、2-羟基乙胺的添加量40mg/l，在此基础上，研究发酵培养基b对菌体浓度、谷氨酸含量以及糖酸转化率的影响。对照组1采用发酵培养基a进行发酵，不采用发酵培养基b，100l发酵罐中含有70l发酵培养基a；发酵工艺参照实施例1。对照组2：发酵培养基b中不添加琥珀酸，其余同实施例1。对照组3：发酵培养基b中不添加壳聚糖，其余同实施例1。对照组4：发酵培养基a中添加5g/l的琥珀酸，其余同对照组1。实验组为实施例1。具体结果见表1。表1组别菌浓度od600nm谷氨酸产量g/l糖酸转化率％对照组：对照组1采用单一发酵培养基发酵，谷氨酸产量和糖酸转化率明显低于实验组，各组别菌体浓度差异并不大；对照组4在对照组1的基础上添加了琥珀酸，对菌体浓度并没有影响，谷氨酸产量和糖酸转化率也没有明显差异，可能原因是，发酵前期以菌体增殖为主，产酸较少，琥珀酸对菌体增殖并没有明显的刺激作用。RPMI1640培养基在免疫细胞培养中表现出色。

    拟南芥根愈伤**诱导时，培养6-9d在切口处开始出现少量颗粒状愈伤**，培养20-22d获得淡黄色松脆型愈伤**，在愈伤**周围观察到大量致密分布的白毛，颗粒状愈伤**诱导率及愈伤**总诱导率均为100％。如图5所示。培养实例5和对比培养例5的诱导结果比较：用上述方法进行哥伦比亚拟南芥叶片和根愈伤**诱导时，cs诱导培养基与ms诱导培养基的颗粒状愈伤**诱导率及愈伤**总诱导率均为100％，但cs诱导培养基的愈伤**出愈时间比ms诱导培养基提前至少1d；在相同培养条件下，与ms诱导培养基相比，经cs诱导培养基诱导的叶片团块状愈伤**更大、诱导的根愈伤**更多。如图5所示。培养实例6：本氏***叶片及根愈伤**诱导培养实例6与培养实例5不同的地方在于，步骤(1)将；步骤(2)将2,；步骤(3)所取叶片为本氏***无菌苗叶片，用手术剪刀将无菌叶片剪成，用镊子将其平铺于诱导培养基；步骤(4)所取根为本氏***无菌苗的根，cs诱导培养基的诱导结果为：本氏***叶片愈伤**诱导时，培养15-18d的叶片明显增大增厚，叶片四周产生大量的淡绿色致密的愈伤**，愈伤**诱导率为100％，且在愈伤**团块上已开始产生多个嫩绿色的不定芽；本氏***根愈伤**诱导时，培养9-11d在切口处产生大量淡黄色致密的愈伤**。F12培养基确保了实验结果的一致性和可靠性。中国香港Ham's F12培养基技术指导

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